Les aptamères sont des oligomères d’ADN ou d’ARN simple brin qui, en se repliant sous forme de structures tridimensionnelles peuvent avoir des interactions fortes et spécifiques envers un certain nombre de cibles.
L’objectif de cette thèse a été de compléter les études existantes sur l’utilisation de l’électrophorèse capillaire (CE) et les aptamères afin de mettre au point une méthode de sélection d’aptamères par CE couplée à la fluorescence induite par laser et le séquençage haut-débit Illumina.
Dans un premier temps, nous avons mis au point une méthode de détection et de séparation par électrophorèse capillaire couplée à la double détection UV-LEDIF d’une banque d’ADN en interaction avec une cible : la thrombine. C’est un modèle déjà étudié pour lequel deux aptamères ont fait l’objet de publications. Nous avons utilisé l’aptamère T29 dans le cadre de notre étude car c’est celui qui présente la meilleure affinité.
L’électrophorèse capillaire est un puissant outil analytique qui facilite l’efficacité de sélection des aptamères et précise la détermination des paramètres d’interactions. Nous avons ainsi pu déterminer la constante d’affinité KD par CE-UV-LEDIF sur le modèle de base : la thrombine.
Par ailleurs, nous montrons également comment l’utilisation du tampon Tris peut dégrader un ADN simple brin en électrophorèse capillaire et nous proposons comme alternative l’utilisation d’un tampon sodium phosphate dibasique qui évite ce phénomène de dégradation.
Enfin, nous expliquons la difficulté d’amplification par qPCR et PCR d’un aptamère comme le T29 ayant une structure en G-quadruplex. Nous avons montré que le séquençage haut-débit Illumina nous a permis de trouver une corrélation entre le nombre de molécules séquencées et le nombre de séquences obtenues. L’analyse des séquences obtenues montre une quantité importante (20%) de séquences de T29 qui ne correspondent pas à la séquence de cet aptamère. Cela prouve que les étapes de PCR et de séquençage haut débit pour la détection de G-quadruplex peuvent induire un biais dans l’identification de ces molécules. |
Aptamers are oligomers of small single-stranded DNA or RNA which can have strong and specific interactions with some targets when they fold into three-dimensional structures.
The objective of this thesis was to complete existing studies on the use of capillary electrophoresis in order to develop a method for the selection of aptamers by CE coupled to laser induced fluorescence and Illumina high-throughput sequencing.
In a first step, we developed a method of detection and separation by capillary electrophoresis coupled with the double detection UV-LEDIF of a DNA library interacting with a target: thrombin. It is a model already studied and for which two aptamers have been published. We used aptamer T29 as part of our study because it has the best affinity.
Capillary Electrophoresis is a powerful analytical tool that facilitates the selection efficiency of aptamers and specifies the determination of the interaction parameters. We thus were able to determine the affinity constant KD by CE-UV-LEDIF on the basic model: thrombin.
Moreover, we also show how the use of Tris buffer can degrade single-stranded DNA during capillary electrophoresis and we propose as an alternative the use of a dibasic sodium phosphate buffer which avoids the phenomenon of degradation.
Finally, we explain the difficulty of amplification by qPCR and PCR of an aptamer such as T29 with a G-quadruplex structure. We showed that the Illumina high-throughput sequencing allowed us to find a correlation between the number of sequenced molecules and the number of sequences obtained. Analysis of the sequences obtained shows a significant amount (20%) of T29 sequences which do not correspond to the sequence of this aptamer. This shows that the PCR and high-throughput sequencing steps for the detection of G-quadruplex can induce bias in the identification of these molecules. |